植物生态学报  2016 , 40 (1): 69-79 https://doi.org/10.17521/cjpe.2015.0240

研究论文

亚麻响应盐、碱胁迫的生理特征

郭瑞12*, 李峰1, 周际3, 李昊儒12, 夏旭12, 刘琪12

1中国农业科学院农业环境与可持续发展研究所, 北京 100081
2农业部旱作节水农业重点实验室, 北京 100081
3国土资源部土地整治中心, 北京 100034

Eco-physiological responses of linseed (Linum usitatissimum) to salt and alkali stresses

GUO Rui12*, LI Feng1, ZHOU Ji3, LI Hao-Ru12, XIA Xu12, LIU Qi12

1Institute of Environment and Sustainable Development in Agriculture, Chinese Academy of Agricultural Sciences, Beijing 100081, China
2Key Laboratory of Dryland Agriculture, Ministry of Agriculture, Beijing 100081, China
and 3Land Consolidation and Rehabilitation Centre, Ministry of Land and Resources of the People’s Republic of China, Beijing 100034, China

版权声明:  2016 植物生态学报编辑部 本文是遵循CCAL协议的开放存取期刊,引用请务必标明出处。

基金资助: 

国家自然科学基金青年基金(31200243)、国家自然科学基金面上项目(31570328)、国家高技术研究发展计划(“863”计划) (2011AA100503)和中央公益性科研业务费(BSRF 201201)。

展开

摘要

利用中性盐NaCl、Na2SO4和碱性盐NaHCO3、Na2CO3混合模拟不同强度的盐、碱胁迫条件, 对亚麻(Linum usitatissimum)进行14天胁迫处理, 测定其地上部分和根生长速率、光合特征、离子平衡及有机渗透调节物质积累, 以探讨亚麻对盐、碱两种胁迫的生理响应特点。研究表明: 亚麻生长对盐、碱胁迫的响应存在差异, 在相同盐浓度下, 碱胁迫对亚麻的伤害大于盐胁迫。碱胁迫使地上部分中Na+浓度急剧增高, 造成叶绿体破坏、光合色素含量下降, 光合能力及碳同化能力也急剧下降。亚麻中Na+含量随着胁迫强度的增加而升高, 而K+含量呈下降趋势, 碱胁迫下的变化明显大于盐胁迫。因此, 碱胁迫导致Na+过度积累可能是碱胁迫对植物伤害大于盐胁迫的最主要原因。碱胁迫下Ca2+和Mg2+在根中下降明显, 可见高pH值阻碍根对Ca2+和Mg2+的吸收。Fe2+和Zn2+对渗透调节的影响不大, 因为它们的离子含量较低。盐胁迫促进阴离子(Cl-、H2PO4-和SO42-)的积累来平衡大量涌入的Na+, 但是碱胁迫明显减少无机阴离子含量, 可能造成严重营养胁迫(如P和S不足)。亚麻在盐胁迫下积累大量可溶性糖来平衡大量的Na+, 但碱胁迫下积累大量有机酸来维持细胞内离子平衡和pH值稳定, 碱胁迫大量积累的有机酸也可能被分泌到根外调节根外的pH值, 这说明亚麻对两种不同胁迫的响应方式不同。研究证明高pH值会直接影响植物根系的生长发育, 影响植物矿质元素的吸收, 阻碍离子稳态重建, 有机酸代谢是亚麻碱胁迫下的关键适应机制。

关键词: 亚麻 ; 盐胁迫 ; 碱胁迫 ; 生长特性 ; 光合特性 ; 离子平衡 ; 渗透调节

Abstract

AimsEffects of salt and alkali stresses (NaCl-Na2SO4 and NaHCO3-Na2CO3) were compared on growth, photosynthesis characters, ionic balance and osmotic adjustment of linseed (Linum usitatissimum), to elucidate the mechanisms of salt and alkali stress (high pH value) damage to plants, and their physiological adaptive mechanisms to the stresses. MethodsThe experiment was carried out in an artificial greenhouse. Plants grew at approximately 700 mmol·m-2·s-1 photosynthetic photon flux density (PPFD) in greenhouse under photoperiod of 15 h in light and 9 h in dark. In each plastic pot (17 cm diameter) which contained 2.5 kg of washed sand, 20 linseed seeds were sown. The seedlings were exposed to stresses lasting 14 days after 2 months.Important findingsThe inhibitory effects of alkali stress on linseed growth were more remarkable than those of salt stress, indicating that alkali and salt represent two distinct forms of stress. The alkali stress increased the Na+ content in shoots, damaged the photosynthetic system, and highly reduced the net photosynthetic rate and C assimilation capacity. Under salinity stress, the Na+ content increased, the K+ content decreased with increasing stress. Greater changes were observed under alkali than under salt stress. Alkali stress caused the massive influx of Na+, which probably explained that the harmful of alkali stress on plants was stronger than that of salt stress. Under alkali stress, Ca2+ and Mg2+ decreased in roots, showing that high pH value around roots hindered the absorption of them. Fe2+ and Zn2+ had little effects on the osmotic adjustment, mainly because of they had a low ion content. Under salt stress, anion increased in order to balance the sharp increase of Na+. However, alkali stress made severe deficit of negative charge, broke the intracellular ionic balance and pH homeostasis, and caused a series of strain response. Our results showed that linseed enhanced the synthesis of soluble sugars to balance massive influx of Na+ under salt stress, but linseed enhanced the synthesis of organic acids to compensate for the shortage of inorganic anions, which might be a key pathway for the pH adjustment. In conclusion, the alkali stress (high pH value) clearly inhibited the growth, element absorption, ion homeostasis reconstruction of plants. Organic acid concentration is possibly a key adaptive factor for linseed to maintain intracellular ion balance and regulate high pH value under alkali stress.

Keywords: Linum usitatissimum ; salt stress ; alkali stress ; growth characters ; photosynthesis characters ; ionic balance ; osmotic adjustment

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郭瑞, 李峰, 周际, 李昊儒, 夏旭, 刘琪. 亚麻响应盐、碱胁迫的生理特征[J]. 植物生态学报, 2016, 40(1): 69-79 https://doi.org/10.17521/cjpe.2015.0240

GUO Rui, LI Feng, ZHOU Ji, LI Hao-Ru, XIA Xu, LIU Qi. Eco-physiological responses of linseed (Linum usitatissimum) to salt and alkali stresses[J]. Chinese Journal of Plant Ecology, 2016, 40(1): 69-79 https://doi.org/10.17521/cjpe.2015.0240

全世界盐碱地面积已经超过总陆地面积的6%和农业灌溉面积的20%, 预计到2050年, 将会有超过50%的耕地盐渍化(张建锋等, 2005)。我国耕地中盐碱地约占15%, 另外还有2000多万hm2的盐荒地(李彬等, 2005)。根据我国土壤特性和所含盐分特点, 将其分为盐土和碱土两大类, 其中最主要的致害离子为Na+、Cl-、HCO3-和CO32-, 这些离子对植物的胁迫作用, 除了包括直接的胁迫效应外, 还包括离子间复杂的相互作用(石德成等, 2002)。

盐胁迫主要是渗透胁迫和离子毒害, 它影响各种离子在植物细胞内的分布, 破坏胞内离子平衡, 植物必须进行渗透调节并在细胞内重建离子稳态(Zhang et al., 2010; Zhang & Shi, 2013)。碱胁迫与盐胁迫相比, 除了渗透胁迫和离子毒害外, 还涉及高pH值伤害(Yang et al., 2008)。植物应对碱胁迫, 不仅要进行细胞内pH值调节以保持离子平衡, 同时还必须付出大量的物质和能量来调节根际微环境的pH值(Shi & Wang, 2005)。所以渗透调节、细胞内离子平衡、根外pH值调节是植物抗碱胁迫的关键所在。

一直以来, 国内外抗盐方面的研究较多考虑单一盐(NaCl)对植物的影响, 主要涉及胁迫生理、表观遗传、离子转运、激素调节、基因表达等方面(孔令安等, 2000; Lu et al., 2013; Wu et al., 2013)。而土壤碱胁迫这一严重的环境问题仍未得到研究者的充分重视, 仅有少量描述性报道涉及植物抗碱生理及分子机制(萨如拉等, 2014; 张一弓等, 2014)。只有区别研究盐胁迫和碱胁迫, 才能真正揭示植物抗盐碱机制, 为最终培育出新的抗盐碱植物品种打下基础, 为盐碱化地的恢复和治理提供理论支持。

亚麻(Linum usitatissimum)不仅是重要的油料作物, 还是一种工业原料。亚麻油富含不饱和脂肪酸和对人体有益的多种营养物质, 另外, 亚麻的天然纤维具有吸汗、透气性良好和对人体无害等特点(McKenzie & Deyholos, 2011)。目前, 有关亚麻盐胁迫下的生理响应研究不多, 且多集中在单一盐(NaCl)方面, 其对碱胁迫的响应及适应机制国内外未见相关报道(Ashraf & Fatima, 2004; Chemikosova et al., 2006)。

考虑到大多数内陆盐碱地的盐分组成特点, 本研究将2种中性盐(NaCl和Na2SO4)和2种碱性盐(NaHCO3和Na2CO3)分别按1:1摩尔比混合, 分别模拟不同强度的盐和碱胁迫条件处理亚麻, 研究亚麻在盐、碱胁迫下的生理生态响应机制, 揭示盐胁迫和碱胁迫的异同点, 同时为亚麻抗盐碱品种的筛选和鉴别提供一定的理论依据。

1 材料和方法

1.1 实验材料

亚麻品种‘宁夏-15’。

1.2 模拟胁迫

根据我国内陆盐碱化土壤主要盐分组成以及盐度、碱度复杂多变的特点。选取NaCl、Na2SO4、NaHCO3和Na2CO3, 模拟土壤盐碱胁迫环境, 其中NaCl、Na2SO4为中性盐, NaHCO3、Na2CO3为碱性盐, 均按摩尔比1:1混合。利用便携式电导仪(DDG- 2080-S, 博取公司, 上海)、露点水势仪(Wescor Psypro, Wescor, Utah, USA)和数字pH计(PHS-3C, 虹益公司, 上海)分别测定各种浓度处理液的电导率、渗透势和pH值。

1.3 材料培养

挑选整齐一致的亚麻种子播种于直径17 cm的塑料花盆内, 每盆装2.5 kg洗净的细砂。共种植40盆, 每盆定苗5株, 出苗后每天用0.5倍Hoagland营养液进行浇灌, 培养2个月。整个实验在室外进行, 并进行人工遮雨, 白天温度为27.0-21.5 ℃, 夜晚为21.5- 18.5 ℃。4周后, 将40盆分为8组, 每组为5盆, 一盆为一个重复。有1组作为胁迫处理前基础生物量指标的测试样品。剩下的7组, 1组为对照组, 每天仍浇0.5倍Hoagland营养液; 其他6组按照设计的不同浓度对亚麻幼苗进行连续14天的胁迫处理。第15天对实验样品进行取样, 将根和地上部分从子叶痕处分离开来。称鲜质量后, 将植株置于80 ℃烘箱内杀青15 min, 杀青后将植株转置40 ℃的真空干燥器内烘干至恒质量, 称取干质量并记录。将样品磨成粉末, 用于测定各种溶质含量。

1.4 生理指标测定

1.4.1 生长指标的测定

相对生长率(RGR) = (ln处理后干质量-ln处理前干质量)/处理天数(Kingsbury et al., 1984)

绝对含水量(AWC) = (鲜质量-干质量)/鲜质量, 单位为mg·g-1

1.4.2 光合特性指标的测定

在取样前利用荧光仪(IMAGING-PAM, WALZ, Effeltrich, Germany)测定叶绿素荧光参数: 光系统II (PSII)原初光能转换效率(ΦPSII)、非光化学淬灭(NPQ)、光化学淬灭系数(qP), 各参数数值均是在选定模式下系统自动计算生成。测定前, 叶片暗适应20 min, 每个处理测定5个叶片, 所有操作均在背景光强低于1 μmol·m-2·s-1的环境中进行。仪器的饱和脉冲光的强度为2400 μmol·m-2·s-1, 光化光强设为默认值185 μmol·m-2·s-1, 测量光低于0.5 μmol·m-2·s-1 (Genty et al., 1989)。

待荧光测量完毕后, 将叶片采下, 洗净磨碎, 称取样品0.1 mg, 用体积比1:1的丙酮和无水乙醇作为萃取液进行萃取。在波长440、645和663 nm下测定吸光度, 每一个萃取实验要进行5次重复。应用Arnon (1949)方程计算叶绿素含量。

1.4.3 无机溶质指标的测定

使用离子色谱系统(DX-300, Thermo Fisher Sci- entific, Massachusetts, USA)、色谱柱(AS4A-SC, Dionex, Sunnyvale, USA)和电导检测器(CDM-II, Dionex, Sunnyvale, USA)测定。使用Na2CO3: NaHCO3 = 1.7:1.8 (mmol·L-1)的混合溶液作为流动相。测量阳离子(K+、Na+、Ca2+和Mg2+)和阴离子(NO3-、Cl-、SO42-和H2PO4-)含量。

1.4.4 有机溶质指标的测定

在70 ℃下利用70%酒精对样品进行萃取, 并参照鲍士旦(1981)使用蒽酮方法测定可溶性糖含量。利用HCl (0.05 mol·L-1)在100 ℃下提取2 h, 用高压液相色谱法分析测定有机酸组分及含量, 方法参照荆家海和丁钟荣(1981)。脯氨酸和甜菜碱的提取和测定分别参考朱广廉等(1983)和Gorham等(1982)的方法。

1.5 数据分析

利用SPSS 17.0和Excel对数据进行统计、分析及绘图, 试验数据以平均值±标准误差表示, 每个数据均是5次重复的平均值, 采用Duncan检测植物各项生理参数的差异性, p < 0.05被视为存在显著性 差异。

表1   不同盐浓度处理液电导率、pH值和水势值

Table 1   The electrical conductivity (EC), pH value and osmotic potential under different levels of salinity stress treatment solutions

处理
Treatment
总盐度
Salinity
(mmol·L-1)
电导率
EC
(dS·m-1)
渗透势
Osmotic potential (MPa)
pH值
pH
value
对照 Control02.17-0.056.97
盐胁迫
Salt stress
405.65-0.256.51
808.67-0.436.55
12011.33-0.606.46
碱胁迫
Alkali stress
404.40-0.239.66
807.15-0.419.82
12010.35-0.569.94

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2 结果

2.1 盐、碱胁迫对亚麻生长特性的影响

当盐浓度大于40 mmol·L-1时, 亚麻地上部分和根RGR开始下降, 并随盐浓度增加而加速下降, 碱胁迫的下降幅度均大于相同浓度的盐胁迫; 高碱胁迫(120 mmol·L-1)下亚麻根RGR降到很低的水平(图1A、1B, p < 0.05)。盐、碱胁迫下亚麻地上部分、根含水量均随胁迫强度增加而下降, 而碱胁迫下含水量下降幅度明显大于盐胁迫下(图1C、1D, p < 0.05)。

图1   盐、碱胁迫对亚麻地上部分和根相对生长率(RGR)和绝对含水量(WC)的影响(平均值±标准误差, n = 5)。不同小写字母表示不同处理间差异显著(p < 0.05)。

Fig. 1   Effects of salt and alkali stresses on shoot and root ground relative growth rate (RGR) and on absolute water content (AWC) (mean ± SE, n = 5). Different small letters indicate significant differences between different treatments (p < 0.05).

2.2 盐、碱胁迫对亚麻光合特性的影响

与对照相比, 盐胁迫对亚麻叶片各项荧光参数影响较小, 且差异不显著(图2A-2C, p < 0.05)。但是碱胁迫浓度大于80 mmol·L-1时, 各项荧光参数变化明显, ΦPSIIqP随胁迫强度增加而下降, 与其相对的是NPQ随胁迫强度增加而上升(图2A-2C, p < 0.05)。

图2   盐、碱胁迫对亚麻叶片光系统II原初光能转换效率(ΦPSII)、非光化学淬灭(NPQ)、光化学淬灭系数(qP)、叶绿素a (Chl a)、叶绿素b (Chl b)和类胡萝卜素(Car)含量的影响(平均值±标准误差, n = 5)。不同小写字母表示不同处理间差异显著(p < 0.05)。

Fig. 2   Effects of salt and alkali stresses on the maximum PSII quantum yield (ΦPSII), non-photochemical quenching (NPQ) and photochemical quenching (qP) of chlorophyll a fluorescence, and chlorophyll a (Chl a), chlorophyll b (Chl b), carotenoids (Car) parameters in leaves of linseed seedlings (mean ± SE, n = 5). Different small letters indicate significant differences between different treatments (p < 0.05).

盐胁迫和中低度碱胁迫均没有影响亚麻叶绿素含量的变化, 但高强度碱胁迫(120 mmol·L-1)导致3种叶绿素均急剧下降(图2D-2F, p < 0.05)。

2.3 盐、碱胁迫对亚麻离子平衡的影响

与对照相比, 盐、碱胁迫对地上部分中K+影响较小, 只有在盐浓度大于80 mmol·L-1后K+含量才开始下降。但是根中K+含量下降明显, 且碱胁迫处理下降程度明显大于盐胁迫(图3A1、3A2, p < 0.05)。地上部分和根中Na+含量均随盐度增加呈增加趋势, 且碱胁迫下增加幅度明显高于盐胁迫(图3B1、3B2, p < 0.05)。如图3所示, Ca2+和Mg2+变化趋势基本一致。地上部分中Ca2+和Mg2+含量在盐、碱胁迫下无显著变化, 在根中Ca2+和Mg2+含量则随胁迫强度增加而呈现下降趋势, 碱胁迫下降幅度明显大于盐胁迫(图3C1、3C2, 3D1、3D2, p < 0.05)。与对照相比, 盐、碱胁迫使地上部分、根K+/Na+, Ca2+/Na+和Mg2+/Na+大幅度下降, 且随盐度增加缓慢降低, 碱胁迫下的下降幅度均大于盐胁迫(图3E1-3G2, p < 0.05)。随着盐度增加, 盐胁迫下亚麻地上部分和根中的Cl-含量均增加, 碱胁迫下Cl-含量均下降, 根中的下降幅度明显大于地上部分(图4A1和A2, p < 0.05)。盐、碱胁迫下地上部分和根中NO3-含量均低于对照, 根中NO3-含量在碱胁迫下明显低于盐胁迫(图4B1和B2, p < 0.05)。随着胁迫强度增加, 盐胁迫均使地上部分和根中H2PO4-和SO42-含量增加, 但碱胁迫均导致其含量降低, 尤其在根中(图4C1-4D2, p < 0.05)。

图3   盐、碱胁迫对亚麻地上部分和根中K+, Na+, Ca2+, Mg2+, K+/Na+, Ca2+/ Na+和Mg2+/Na+含量的影响(平均值±标准误差, n = 5)。不同小写字母表示不同处理间差异显著(p < 0.05)。

Fig. 3   Effects of salt and alkali stresses on the contents of K+, Na+, Ca2+, Mg2+, K+/Na+, Ca2+/Na+ and Mg2+/Na+ in the shoots and roots of linseed seedlings (mean ± SE, n = 5). Different small letters indicate significant differences between different treatments (p < 0.05).

2.4 盐、碱胁迫对亚麻有机溶质的影响

图5A1、5A2所示, 随着胁迫强度的增加, 亚麻地上部分和根中可溶性糖含量在盐胁迫下呈现上升趋势, 而碱胁迫下呈现下降趋势(p < 0.05)。地上部分和根中有机酸在盐胁迫下或稍有减少或无明显变化, 但碱胁迫下有机酸含量不仅明显高于相同强度盐胁迫下, 而且均随盐度增加而明显上升(图5B1, 5B2, p < 0.05)。另外, 盐、碱胁迫均使脯氨酸含量增加, 碱胁迫下增加幅度大于盐胁迫(5C1, 5C2, p < 0.05)。盐、碱胁迫下亚麻不但不积累甜菜碱, 反而抑制其合成, 导致含量降低, 根中含量降低幅度大于地上部分中(5D1, 5D2, p < 0.05)。

图4   盐、碱胁迫对亚麻地上部分和根干物质中Cl-、NO3-、H2PO4-和SO42-含量的影响(平均值±标准误差, n = 5)。不同小写字母表示不同处理间差异显著(p < 0.05)。

Fig. 4   Effects of salt and alkali stresses on the contents of Cl-, NO3-, H2PO4- and SO42- in the shoots and roots of linseed seedlings (mean ± SE, n = 5). Different small letters indicate significant differences between different treatments (p < 0.05).

图5   盐、碱胁迫对亚麻地上部分和根干物质中可溶性糖、有机酸、脯氨酸和甜菜碱含量的影响(平均值±标准误差, n = 5)。不同小写字母表示不同处理间差异显著(p < 0.05)。

Fig. 5   Effects of salt and alkali stresses on the contents of soluble sugars, organic acid, proline and betaine in the shoots and roots of linseed seedlings (mean ± SE, n = 5). Different small letters indicate significant differences between different treatments (p < 0.05).

3 讨论

3.1 盐、碱胁迫对亚麻生长特性的影响

RGR是生命活动的最终体现, 可以作为植物对外界环境胁迫的响应指标(Yang et al., 2008)。本实验结果表明在相同盐浓度下, 碱胁迫RGR降幅大于盐胁迫。碱胁迫对植物的伤害甚于盐胁迫的原因可能与两种胁迫的作用机制有关, 盐胁迫主要是渗透胁迫及离子毒害, 而碱胁迫除包括这两种胁迫作用外, 还包括高pH胁迫(石德成等, 2002)。当胁迫强度大于40 mmol·L-1时, 碱胁迫(高pH值)明显地抑制亚麻RGR, 尤其是根系生长(图1)。该结果与抗碱植物明显不同, 例如地肤(Kochia scoparia)和虎尾草(Chl- oris virgata) (Yang et al., 2008)。抗碱植物在高强度碱胁迫下仍然可以保持较强的根RGR, 这表明植物的根系对pH值的调节和适应能力, 可能是决定植物体自身抗碱性的关键生理特性。AWC的变化可以反映植物体受到外界环境胁迫时的基本生理反应。盐、碱胁迫下亚麻AWC的变化趋势和RGR相似。结果充分证明盐、碱胁迫属于不同胁迫类型, 碱胁迫对植物构成的危害明显大于盐胁迫。得到的结论与以往的一些报道相一致(颜宏等, 2000; 石德成等, 2002)。高pH值会引起根系周围某些离子发生沉淀, 导致根系附近离子失衡, 破坏根系对营养元素的吸收; 另外, 高pH值可能会导致泡内质子减少, 进而破坏或抑制根细胞跨膜电化学势梯度, 最终影响根系的正常生理功能。

3.2 盐、碱胁迫对亚麻光合特性的影响

叶绿素荧光特性可以反映出外界胁迫环境对植物光合器官的伤害程度, 其中PSII变化可以清楚显示出外界环境对植物光合能力的影响程度(冯玉龙等, 2001; 梁红柱等, 2004)。本研究发现, 盐胁迫下亚麻叶片各项荧光参数并没有明显的变化, 这表明盐胁迫对植物体自身的光合能力影响并不明显, 之前的一些报道(Everard et al., 1994; Lu et al., 2002) 也证明了这一点。但是, 碱胁迫下PSII活性下降明显, 表明碱胁迫引起了光抑制, 导致亚麻叶片的光合能力降低, 主要原因可能是大量Na+和高pH值共同作用的结果。NQP属于光合系统的自我保护机制, 在碱胁迫下NQP的增加有利于提高光能利用效率, 增强光电子传递速率。qP反映了光化学能量转换的能力, 是反映光合速率高低的有效指标, 本实验结果表明碱胁迫严重抑制了亚麻的光合效率(Bolhàr- Nordenkampf et al., 1989)。叶绿素和类胡萝卜素是高等植物的主要光合色素。叶绿素和类胡萝卜素的积累在盐胁迫下变化不明显, 但是在碱胁迫下下降明显。这可能是碱胁迫引起Mg沉淀从而抑制了叶绿素和类胡萝卜素的合成(Reddy & Vora, 1986; Shi & Zhao, 1997)。另外, 也有可能是高pH值促进了叶绿素分解酶的活性。

3.3 盐、碱胁迫对亚麻离子平衡的影响

Na+和K+代谢是植物适应盐渍环境最为重要的生理代谢活动, Na+对于大多数植物而言是有害的, 当环境中Na+含量增高时, 会拮抗植物对K+的吸收, 从而限制植物生长(Brugnoli & Lauteri, 1991; 王宁等, 2015)。本研究发现, 盐、碱胁迫均造成亚麻地上部分和根中Na+含量升高, K+含量降低, 碱胁迫下的变化趋势明显大于盐胁迫(图3A1, 3A2, 3B1, 3B2)。结果表明与盐胁迫相比, 碱胁迫的高pH值进一步干扰和破坏了根对Na+、K+吸收的选择性, 导致体内Na+、K+严重失衡, 这是碱胁迫危害大于盐胁迫的一个主要原因。另外, 碱胁迫下亚麻地上部分中积累大量Na+, 致使叶绿体遭到破坏, 叶绿素含量急剧下降, 导致光合能力降低(图2)。研究还发现, 与根相比, 地上部分中K+含量保持在较高水平, 这说明亚麻有一个将Na+控制在根部而将更多的K+运输到地上部分的控制适应过程(Munns & Tester, 2008)。Ca2+对维持细胞膜的稳定性起着重要作用, Mg2+是叶绿素的主要组分, 研究发现某些植物的Ca2+、Mg2+积累受到盐胁迫抑制。本研究结果表明盐、碱胁迫对亚麻地上部分中Ca2+、Mg2+含量影响不大, 但碱胁迫明显降低其在根中的含量(图3C1, 3C2, 3D1, 3D2)。Ca2+作为第二信使与盐超敏感性蛋白(SOS3)结合, 刺激SOS2的激酶活性, 排出有毒离子Na+ (Zhu, 2003)。但是碱胁迫(高pH值)导致根周围Ca2+沉淀, Ca2+吸收明显受阻, 进而影响Na+外排, 加速了离子毒害作用。另外, Na+/H+逆向转运蛋白依靠细胞膜两侧质子梯度排出Na+, 高pH值导致质子亏缺, 质子梯度难于建立, Na+不能外排, 导致植物体内积累大量的Na+ (Tester & Davenport, 2003; 王宁等, 2015)。植物体维持细胞内离子平衡是保障各种代谢过程正常进行的必要条件, 离子平衡实际上就是阴阳离子平衡的过程(杨春武等, 2008)。植物吸收阳离子除了特异性离子通道外, 还有一类非选择性阳离子通道(Munns & Tester, 2008), 盐碱胁迫下Na+大量进入根部, 可能直接抑制根对其他营养离子的吸收, 导致植物体内离子比率失衡, 如图3中可见盐、碱胁迫明显降低亚麻K+/Na+、Ca2+/Na+和Mg2+/Na+, 并且碱胁迫下的下降幅度均大于盐胁迫。研究还发现, 盐、碱胁迫造成NO3-含量降低, 表明大量Na+积累阻碍根对NO3-的吸收, 明显干扰氮吸收或代谢。碱胁迫强烈干扰无机阴离子积累和分布, 碱胁迫(高pH值)阻碍质子梯度的建立, 从而抑制亚麻根系对阴离子的吸收, 造成植物营养缺乏, 这可能是碱胁迫对植物伤害甚于盐胁迫的另一个重要原因。

3.4 盐、碱胁迫对亚麻有机溶质的影响

植物在遭受盐胁迫时通常会迅速积累一些有机溶质作为细胞质中的渗透调节物质, 除渗透调节作用外, 还可以保护生物大分子并清除自由基(王罗霞等, 2006)。可溶性糖是植物生命活动最主要的能源物质, 而且它还具有渗透保护、碳贮存和自由基清除的功能(Hare et al., 1998)。本研究结果表明盐胁迫促进可溶性糖的合成和积累, 它不仅参与渗透调节, 还中和大量的Na+避免离子伤害, 因此可溶性糖的积累可以增强亚麻对盐渍环境的耐性(Gao et al., 2001)。但是, 碱胁迫尤其是高碱胁迫抑制了可溶性糖的积累, 这可能是大量的Na+和高pH值共同作用的结果, 碱胁迫破坏了光系统结构, 造成了光合能力降低, 影响碳同化过程(Guo et al., 2011)。脯氨酸和甜菜碱作为非毒性的渗透调节物质在植物抗逆生理中起非常重要的作用(彭志红等, 2002; 张立新和李生秀, 2004)。盐、碱胁迫都明显刺激了脯氨酸的积累, 脯氨酸的积累可能是长期离子毒性的代谢反应, 其含量的增加可能出于维持渗透压和平衡细胞液泡内无机离子浓度的需要。甜菜碱在盐碱胁迫下呈现下降的趋势, 这可能是由于Na+的大量沉淀, 造成根对NO3-吸收降低, 阻碍了N代谢的正常进行, 影响了甜菜碱的合成。从有机酸实验结果可知, 亚麻可能通过促进有机酸的合成来弥补无机阴离子的缺失和维护细胞内pH值的稳定(汪建飞和沈其荣, 2006)。根中合成的有机酸可能是用来调节根外的pH值, 增加根系对铁等矿质元素的吸收和利用, 进而缓解碱胁迫造成的营养缺失和离子失衡。

The authors have declared that no competing interests exist.

作者声明没有竞争性利益冲突.


参考文献

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